Anipill®核心體溫膠囊是一款可連續(xù)監(jiān)測、記錄并無線傳輸核心體溫信號的微型膠囊。

適用動物及使用方式：小動物（大小鼠）可進行皮下或腹腔植入；中大型動物（比格犬、兔子、豬等）可選擇皮下或腹腔植入，也可經(jīng)口腔攝入進入體內(nèi)，通過胃、腸道，最后由排出。使用簡單方便，廣泛用于小動物以及中大型動物的核心體溫監(jiān)測。

ANIMALS MONITORING的動物核心體溫膠囊包括：Anipill膠囊和Anilogger檢測儀。

Anipill膠囊用于植入（或吞服入）動物體內(nèi)，采集動物的核心體溫；膠囊通過無線信號傳輸，將采集到的體溫信息傳輸給Anilogger監(jiān)測儀，進行顯示和讀取，是款式高精度的核心體溫采集設(shè)備。

應(yīng)用于體溫調(diào)節(jié)研究、感染學(xué)、生物節(jié)律分析、動物休眠、免疫和疫苗開發(fā)、毒理學(xué)研究等加強對實驗動物的體溫監(jiān)測。可以連續(xù)的收集可靠和準(zhǔn)確的核心溫度數(shù)據(jù), 同時保持小動物的舒適性和可移動性等正常生理狀態(tài)。

Anipill膠囊適用于多種動物，如：大鼠、小鼠、比格犬、兔子等。

體溫膠囊的主要特點：

·膠囊體積小巧，可口服（視動物大小而定）或植入使用，使用簡單，對動物友好；

·無線無導(dǎo)管測量，測試對象亦無需實時佩戴監(jiān)測器，實現(xiàn)無任何限制測量方案；

·監(jiān)測器可同時監(jiān)測 8 枚膠囊數(shù)據(jù)，且自身可最多 7 臺并聯(lián)，實現(xiàn)測量高通量；

·膠囊內(nèi)置存儲記憶功能，可存儲多達 2000 組數(shù)據(jù)，無需擔(dān)心數(shù)據(jù)丟失；

·基于遙測技術(shù)，實時連續(xù)的核心溫度監(jiān)測。

主要技術(shù)參數(shù)：

 測量參數(shù)：適用溫度25-45℃，精確度0.02℃，采樣頻率30Hz（可設(shè)定），內(nèi)部可存儲2000組數(shù)據(jù)；

 傳輸參數(shù)：傳輸距離1-3m，傳輸頻率433Hz；

 使用壽命：20天

 規(guī)格參數(shù)：17.7*8.9mm，重1.7g；

 可同時監(jiān)測并顯示8只動物體內(nèi)膠囊的傳輸，并可通過PC/MAC觀察分析；

 每臺監(jiān)測器可存儲150,185組數(shù)據(jù)；

應(yīng)用1：體溫調(diào)節(jié)研究

在四只食蟹猴的腹腔分別植入膠囊，然后把它們與其他未植入的食蟹猴在標(biāo)準(zhǔn)條件下共同飼養(yǎng)。在接下來的一周內(nèi)，每隔15分鐘測量一次體溫，實驗結(jié)果如圖。本實驗說明，Anipill系統(tǒng)可以用來連續(xù)、可靠地測量非人靈長類的體溫，并且測量結(jié)果可以清晰地反映出食蟹猴體溫的晝夜波動規(guī)律。

相關(guān)文獻：

· Laperrousaz et al., (2018) Lipoprotein Lipase Expression in Hypothalamus is involved in the Central Regulation of Thermogenesis and the Response to Cold Exposure

· Meyer et al., (2017) Body Temperature Measurements for Metabolic Phenotyping in Mice

· Ru?ange et al., (2020) Pre-warming before general anesthesia with iso?urane delays the onset of hypothermia in rats

應(yīng)用2：動物生理學(xué)?時間生物學(xué)和睡眠研究

植入到非人靈長類腹膜的膠囊收集到的數(shù)據(jù)

在大鼠的腹腔內(nèi)植入膠囊，7天后，監(jiān)測以下三組大鼠的核心體溫在麻醉前后的變化趨勢：預(yù)熱至40℃（PW40, n=17）；預(yù)熱至高于基線體溫1%（PW1%, n = 17）；無預(yù)熱（NW, n = 17）。本實驗說明，在麻醉之前給大鼠進行預(yù)熱，有助于防止麻醉劑引起的體溫過低。

相關(guān)論文：

1.van der Vinne V, Pothecary C A, Wilcox S L, et al. Continuous and non-invasive thermography of mouse skin accurately describes core body temperature patterns, but not absolute core temperature[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1): 20680.
2.Delezie J, Gill J F, Santos G, et al. PGC-1β-expressing POMC neurons mediate the effect of leptin on thermoregulation in the mouse[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1): 1-12.
3.van der Vinne V, Tachinardi P, Riede S J, et al. Maximising survival by shifting the daily timing of activity[J]. Ecology letters, 2019, 22(12): 2097-2102.
4.Hong S H, Hong J H, Lahey M T, et al. A low-cost mouse cage warming system provides improved intra-ischemic and post-ischemic body temperature control–application for reducing variability in experimental stroke studies[J]. Journal of neuroscience methods, 2021, 360: 109228.
5.Belloch F B, Beltrán E, Venzala E, et al. Primary role for melatonin MT2 receptors in the regulation of anhedonia and circadian temperature rhythm[J]. European Neuropsychopharmacology, 2021, 44: 51-65.
6.Tabarean I V. Neurotensin induces hypothermia by activating both neuronal neurotensin receptor 1 and astrocytic neurotensin receptor 2 in the median preoptic nucleus[J]. Neuropharmacology, 2020, 171: 108069.
7.Fenzl A, Kulterer O C, Spirk K, et al. Intact vitamin A transport is critical for cold-mediated adipose tissue browning and thermogenesis[J]. Molecular metabolism, 2020, 42: 101088.

   

    

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